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RTqPCR验证,选哪个lncRNA的



尹师妹要对手里那套lncRNA-seq获得的差异表达lncRNA做RT-qPCR验证,问题来了:

选哪个lncRNA呢?选变化倍数大的?表达量高的?

选lncRNA的哪段呢?5’端?外显子?跟其他基因有重叠怎么办?

尹师妹是个爱思考的好孩纸,比直接拿lncRNA全长cDNA序列找引物靠谱多了~~~

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RT-qPCR验证哪些要素是必须保证的?

第一,打算后面做RT-qPCR验证,那么送去做测序的RNA样品,一定要保留一部分,至少要冻在-80,最好存液氮,或者反转录后存cDNA。

等测序分析结果回来了,用跟测序同一批次的RNA样品做RT-qPCR~

RT-qPCR验证sequencing结果,是用一个技术平台验证另一个技术平台的结果,所以,除了所使用的技术平台不同以外,其他条件都要尽量相同,其中最重要的就是样品一定要相同。

如果用来做RT-qPCR的样品跟测序不是同一批次,那么你验证的就是两层面的叠加:技术平台间的差异+生物学重复间的差异。如果叠加的结果不一致,就搞不清楚是技术平台层面的问题,还是生物学重复的不一致。

第二,要做RT-qPCR的区段,不能与其他基因exon重叠,否则,RT-qPCR结果就混合了两个基因的表达量。

最好选择基因间的lncRNA,即lincRNA,跟其他基因没有重叠。

其次是位于其他基因intron区域的lncRNA。

为什么位置最重要呢?

这是RT-qPCR技术本身的限制决定的。

用Strand-specific技术建库的lncRNA-seq可以区分来自正义链和反义链的转录本,而普通的RT-qPCR不能区分来自不同链的RNA。

第三,PCR产物所在的区段峰较高,且在样品间要有明显的变化。

基因的某些区域可能看不到很多的read,这可能是以下原因导致的:1.PCR或测序偏好;2.基因有不同isoform,在你的样品里可能只表达其中一种isoform;3.基因结构注释有问题。

选择高峰所在的区段能保证万无一失。

第四,高表达量和变化倍数。

表达量高的基因比表达量低的基因,更容易做RT-qPCR,Ct值更低,结果更可靠;另外,表达量高的基因,其差异表达筛选时的准确性更高。原理不同,所以sequencing和RT-qPCR计算出来的变化倍数不可比,只要变化趋势相同即可。

总结,用来做RT-qPCR的差异表达lncRNA及引物设计区段的选取原则:

1.按lncRNA类型排序,优先选择lincRNA(基因间的lncRNA),和位于其他基因intron区的lncRNA;与其他基因exon有重叠的lncRNA,可选择其中无重叠的区段。

2.按FPKM或reads数排序,优先选择前50%的lncRNA。

3.按变化倍数排序,优先选择前50%的lncRNA。

注:具体限制多少FPKM或reads数或变化倍数,由整体测序深度和差异表达基因的数量决定,保留排在前面的一半左右,自己斟酌。

4.PCR产物所在的区段一定要在测序结果里看到明显变化的峰。

举两个例子:

在IGV里面打开bw文件,对满足以上原则的lncRNA,在IGV里逐个搜索,查看read分布。

栗子一:

下图这个lncRNA位于基因间区,有不同的isoform,其中一些exon的read数较多,如图中三个较高的蓝色峰,且在两个样品间有明显的变化,这三个峰所在的位置就适合设计引物。

怎样拿到序列呢?

点击IGV里的这个小图标,然后在你感兴趣的区段左边点一下鼠标,右边点一下鼠标,就出现红色的那一段了,在红色区域点右键,copysequence,粘贴到你的引物设计软件里,就OK啦!

栗子二:

每个sample有Forward和Reverse两个track,分别代表正义链和反义链,你能看到两条链上转录出来的不同的转录本。

下图这个lncRNA位于另一个蛋白编码基因的antisense(箭头标明转录方向),虽然gene结构注释认为lncRNA位于内含子区域,但其下游仍有较多的read分布,可能是基因结构注释的问题。标出红色的区域跟另一个基因的exon没有重叠,且在样品间能看到明显的差异,可以用来设计引物。

哪个引物设计软件好用呢?还要破解PP5吗?

嘿嘿!primer3足矣~









































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